指 标 名 称
单位
规 定
定量≤
g/m²
18.0
亮度(白度)≤
%
88.0
抗张指数
纵向≥
N ·m/g
20.0
横向≥
15.0
撕裂度
纵向
mN
50.0～100
横向
80.0～150
内装量偏差≥
%
-2
可分散性"≤
S
60
交货水分≤
%
9.0
可分散性为参考指标，不作为产品合格与否的判定依据。
本文是学习GB-T 26391-2011 马桶垫纸. 而整理的学习笔记,分享出来希望更多人受益,如果存在侵权请及时联系我们
本标准规定了马桶垫纸的产品分类、要求、试验方法、检验规则及标志、包装、运输和贮存的要求。
本标准适用于以单层薄页纸经模切、折叠制成的马桶垫纸产品。
下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件，其随后所有
的修改单(不包括勘误的内容)或修订版均不适用于本标准，然而，鼓励根据本标准达成协议的各方研究
是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件，其最新版本适用于本标准。
GB/T 451.2 纸和纸板定量的测定
GB/T 455 纸和纸板撕裂度的测定
GB/T 462 纸、纸板和纸浆 分析试样水分的测定
GB/T 7974 纸、纸板和纸浆亮度(白度)的测定 漫射/垂直法
GB/T 10739 纸、纸板和纸浆试样处理和试验的标准大气条件
GB/T 12914 纸和纸板 抗张强度的测定
3.1 马桶垫纸按产品包装形式分为盒装和叠装。
3.2 马桶垫纸按每个包装中的产品数量分为：100张、125张、250张等。
4.1
产品不应有异味。产品中不应夹带杂质和污染物质，如玻璃、木屑、硬的或尖锐的材料、头发、昆虫等。
4.2
产品不应有任何撕裂、孔洞、破损等。模切边缘应整齐，不应有毛边、撕裂口。
4.3 产品应叠放整齐，不应有窝角、毛边。
4.4 马桶垫纸的技术指标应符合表1或订货合同的规定。
表 1
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|---|---|---|---|---|
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style="width:5.72001in;height:0.61336in" />GB/T 26391—2011
4.5 马桶垫纸微生物指标应符合表2的规定。
表 2
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|---|---|---|
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5.1 试样处理和试验的大气条件按GB/T 10739 测定。
5.2 定量按GB/T 451.2测定。
5.3 亮度(白度)按GB/T 7974 测定。
5.4 抗张指数按GB/T12914 测定，仲裁时采用恒速拉伸法测定。
5.5 撕裂度按 GB/T 455 测定。
取1个完整包装的样品，数其实际数量，以实际数量与包装标志的数量之差占包装标志数量的百分
比表示。同规格样品分别测定3个完整包装，以实际数量最小的值计算结果，准确至0.1%。计算方法
见式(1)。
…………
………
(1)
5.9 水分按 GB/T 462 测定。
检验项目为本标准的全部技术指标及微生物指标，有下列情形之一者应进行型式检验：
a) 新老产品转产生产的试制定型；
b) 生产中改变工艺或使用新原料生产，有可能影响产品性能时；
c) 正常生产，每季度进行一次型式检验；
d) 停产后恢复生产时；
e) 出厂检验结果与上次型式检验有较大差异时。
6.2.1
生产厂应保证产品质量符合本标准或合同规定，产品经检验合格并附质量合格标识方可出厂。
6.2.2 以一次交货为一批，交收检验样本单位为箱，每批应不超过150箱。
从一批产品中，随机抽取3箱产品。从每箱中抽取4个小包装样品，其中9个用于微生物检验，
3个用于其他性能检验。
当微生物指标、抗张指数、定量、撕裂度、亮度、内装量偏差、交货水分及外观质量全部合格时，则判
为批合格；当这些检验项目中任一项出现不合格时，则判为批不合格。
GB/T 26391—2011
7.1.1 产品销售包装上应标明以下内容：
a) 产品名称、执行标准编号、商标；
b) 企业名称、地址、联系方式；
c) 产品规格、内装数量；
d) 生产日期和保质期或生产批号和限期使用日期。
7.1.2 产品的销售包装应能保证产品不受污染。
7.2.1
马桶垫纸成品放于包装箱中。包装箱上应标明产品名称、企业(或经销商)名称和地址、内装数
量等。包装箱上应标明运输及贮存条件。
7.2.2
产品在运输过程中应使用具有防护措施的洁净的工具，防止重压、尖物碰撞及日晒雨淋。
7.2.3
成品应保存在干燥通风，不受阳光直接照射的室内，防止雨雪淋袭和地面湿气的影响，不应与有
污染或有毒化学品共存。
7.2.4 超过保质期的产品，经重新检验合格后方可限期使用。
GB/T 26391—2011
(规范性附录)
微生物指标的测定
A.1 培养基与试剂的制备
A.1.1 营养琼脂培养基
制法：称取33 g 营养琼脂，溶于1 L
蒸馏水中，加热煮沸至完全溶解，分装，经过121℃高压灭
菌15 min 后备用。
A.1.2 乳糖胆盐发酵管
制法：称取35 g 乳糖胆盐发酵培养基，溶于1 L
蒸馏水中，待完全溶解后分装，每管50 mL, 并放入
一个倒管，115℃高压灭菌15 min 即得。
A.1.3 伊红美蓝琼脂培养基
制法：称取36 g 伊红美蓝琼脂培养基，溶于1L 蒸馏水中，浸泡15 min,
加热煮至完全溶解后，经
115℃高压灭菌15 min, 冷却至50℃~60℃,振摇培养基倾注灭菌平皿备用。
A.1.4 乳糖发酵管
制法：称取25.3 g 乳糖发酵培养基，溶于1 L 蒸馏水中，浸泡5 min,
加热至完全溶解后，分装于有
倒管的试管内，115℃高压灭菌15 min 即得。
A.1.5 血琼脂培养基
制法：将灭菌后的营养琼脂加热溶化，待凉至约50℃,即在无菌操作下按营养琼脂：脱纤维血为
10:1的比例加入脱纤维血，摇匀，倒入灭菌平皿，置冰箱备用。
A.1.6 兔血浆
制法：取灭菌3.8%柠檬酸钠1份，加兔全血4份摇匀静置，3000 r/min 离 心 5
min, 取上清液，
弃血球。
A.1.7 革兰氏染色液
结晶紫染色液：
结晶紫
95%酒精
1%草酸铵水溶液
l g
将结晶紫溶解于酒精中，然后与草酸铵溶液混合。
革兰氏碘液：
碘
碘化钾
蒸馏水
将碘与碘化钾混合，加入蒸馏水少许充分振摇，待完全溶解后再加蒸馏水至300
mL。
沙黄复染液：
沙黄
95%酒精
蒸馏水
将沙黄溶解于酒精之中，然后用蒸馏水稀释。
A.1.8 甘露醇发酵培养基
制法：称取30g 甘露醇发酵培养基溶于1 L
蒸馏水中，加热煮沸至完全溶解，分装，115℃高压灭菌
GB/T 26391—2011
A.1.9 7.5% 氯化钠肉汤培养基
制法：称取88g7.5% 氯化钠肉汤培养基溶于1 L
蒸馏水中，加热煮沸至完全溶解，分装后于121℃
高压灭菌15 min 备用。
A.1.10 营养肉汤培养基
制法：称取76 g 营养肉汤培养基溶于1 L
蒸馏水中，加热煮沸至完全溶解，分装后于115℃高压灭
菌20 min 备用。
A.1.11 草酸钾血浆
制法：在5 mL 兔血浆中加入0.01 g
草酸钾，充分混合摇匀，经离心沉淀，吸取上清液，即得。
注：以上各培养基均为成品，采用量可依据产品的说明书而定。
A.2 产品采集与样品处理
于同一批号的三个大包装中至少随机抽取9个最小包装样品。3个样品用于测试，6个样品(可就
地封存)必要时用于复检。样品最小销售包装不得有破损，检测前不得开启。
在超净工作台上用无菌方法至少从3个小包装中称量样品10 g±1g,
剪碎后加入到200 mL 灭菌
生理盐水中，充分混匀，得到一个生理盐水样液。
A.3 细菌菌落总数的检测
A.3.1 操作步骤
共接种5个平皿，每个平皿中加入1 mL 样液，然后将15 mL～20mL
熔化的冷却至45℃左右营
养琼脂倒入平皿内，充分混匀。待琼脂凝固后翻转平皿，置35℃±2℃培养48
h,然后计算平板上的细
菌数(当平板上菌落数超过200时应稀释后再计数)。
A.3.2 结果报告
菌落呈片状生长的平板不宜采用，计数符合要求的平板上的菌落，按式(A.1)
计算结果：
X=A×K/5 … … … … … … … … … …(A. 1)
式中：
X—— 细菌菌落总数，单位为菌落形成单位每克(CFU/g);
A——5
块营养琼脂培养基平板上的细菌菌落总数，单位为菌落形成单位每克(CFU/g);
K-— 稀释度。
当细菌菌落总数在100以内时，按实测数报告；大于100时，采用两位有效数字。
如果样品菌落总数超过标准规定的10%时，按 A.3.3 进行复检和报告结果。
A.3.3 复检
将保存的复检样品依前法复测两次，两次结果平均值都达到标准的规定，则判定被检样品合格，其
中任一次结果平均值超过标准规定，则判被检样品不合格。
A.4 大肠菌群的检测
A.4.1 操作步骤
取样液5 mL 接种于50 mL 乳糖胆盐发酵管，置35℃±2℃培养24
h,如不产酸也不产气，则报告
为大肠菌群未检出。
如果产酸产气，则划线接种伊红美蓝琼脂平板，置35℃±2℃培养18 h～24h,
观察平板上菌落形
态。典型的大肠菌落为黑紫色或红紫色，圆形，边缘整齐，表面光滑湿润，常具有金属光泽，也有的呈紫
黑色，不带或略带金属光泽，或粉红色，中心较深的菌落。
挑取疑似菌落1个～2个做革兰氏染色镜检，同时接种乳糖发酵管，置35℃±2℃培养24
h,观 察
产气情况。
A.4.2 结果报告
凡乳糖胆盐发酵管产酸产气，乳糖发酵管产酸产气，在伊红美蓝平板上有典型大肠菌落，革兰氏染
GB/T 26391—2011
色为阴性无芽胞杆菌，可报告被检样品检出大肠杆菌。
A.5 金黄色葡萄球菌的检测
A.5.1 操作步骤
A.5.1.1 取样液5 mL 加入到50 mL7.5%
氯化钠肉汤培养液中，充分混匀，置35℃±2℃培养24 h。 A.5.1.2
自上述增菌液中取1个～2个接种环，划线接种在血琼脂培养基上，置35℃±2℃培养24
h
~48h。
在血琼脂平板上该菌落呈金黄色，大而突起，圆形，表面光滑，周围有溶血圈。
A.5.1.3
挑取典型菌落，涂片做革兰氏染色镜检，如见排列成葡萄状，无芽胞与荚膜。应进行下列
试验：
A.5.1.3.1 甘露醇发酵管试验
取上述菌落接种到甘露醇培养基中，置35℃±2℃培养24 h,
发酵甘露醇产酸者为阳性。
A.5.1.3.2 血浆凝固酶试验
a) 玻片法：取清洁干燥载玻片 → 于两端分别滴加1滴生理盐水、1滴兔血浆
→挑取菌落分别与两
者混合5 min。
如两者均无凝固则为阴性；如血浆内出现团块或颗粒状凝固，而生理盐水仍呈均匀浑浊无凝固则为
阳性。凡两者均有凝固现象，再进行试管凝固酶试验。
b) 试管法：吸取1:4新鲜血浆0 . 5 mL 置灭菌小试管中 → 加入等量待检菌24
h, 肉汤培养物 0.5mL, 混匀 → 置35℃±2℃温箱或水浴中 → 每0 . 5 h 观察一次
→ 24 h 之内呈现凝块即为
阳性。
同时以已知血浆凝固酶阳性和阴性菌株肉汤培养物各0.5 mL
作阳性和阴性对照。
A.5.2 结果报告
凡在琼脂平板上有可疑菌落生长，镜检为革兰氏阳性葡萄球菌，并能发酵甘露醇产酸、血浆凝固酶
阳性者，可报告被检样品检出金黄色葡萄球菌。
A.6 溶血性链球菌检测方法
A.6.1 操作步骤
A.6.1.1 取 样 液 5mL 加入到50 mL 营养肉汤中，置35℃±2℃培养24 h。
A.6.1.2 将培养物划线接种血琼脂平板，置35℃±2℃中培养24 h,
观察菌落特征。溶血性链球菌在
血平板上为灰白色，半透明或不透明，针尖状突起，表面光滑，边缘整齐，周围有无色透明溶血圈。
A.6.1.3
取典型菌落做涂片革兰氏染色镜检，应为革兰氏阳性，呈链状排列的球菌。镜检符合上述情
况，应进行下列试验：
A.6.1.3.1 链激酶试验
吸取草酸钾血浆0.2 mL→ 加入0 .8 mL 灭菌生理盐水混匀 → 加入待检菌24 h
肉汤培养物0.5 mL 和0 .25%氯化钙0 .25 mL 混匀 → 置35℃±2℃水浴中，2 min
察看一次(一般10 min 内可凝固) → 待 血浆凝固后继续观察并记录溶化时间 →
如2 h 内不溶化，继续放置24 h,观察。如果凝块全部溶化为阳
性，24 h 仍不溶化为阴性。
A.6.1.3.2 杆菌肽敏感试验
将被检菌菌液涂于血平板上 →
用灭菌镊子取每片含0.04单位杆菌肽的纸片放在平板上，同时以已
知阳性菌株作对照 → 置35℃±2℃放置18 h～24 h→有抑菌带者为阳性。
A.6.2 结果报告
镜检革兰氏阳性链状排列球菌，血平板上呈现溶血圈，链激酶和杆菌肽试验阳性，可报告被检样品
检出溶血性链球菌。
GB/T 26391—2011
(规范性附录)
可分散性的测定
B.1 仪器设备
B.1.1 磁力搅拌器。
B.1.2 搅拌棒，长为50 mm±1mm, 直径为10 mm±1 mm。
B.1.3 烘箱，可保持温度在105℃±2℃。
B.1.4 玻璃烧杯，4000 mL。
B.1.5 秒表，精度为0.1 s。
B.2 试验步骤
B.2.1 抽取1张马桶垫纸，在105℃±2℃烘箱中处理15 min,
沿试样的纵向对折3次，再沿试样的横
向对折1次。折叠时不应使试样起死褶。
B.2.2 将玻璃烧杯(B.1.4) 放在磁力搅拌器(B.1.1)
中央，将搅拌棒(B.1.2) 放入烧杯，放入2 L 自
来水。
B.2.3 开启搅拌器(B.1.1), 控制转速在800 r/min±10 r/min。
B.2.4
手握试样开放边缘，移至烧杯中央的上方，将试样闭合的一端对准旋涡的中央。放开试样，当
试样刚刚接触到水时，立即启动秒表。
B.2.5 当试样完全分散时，停止计时，读取分散时间，精确至 s。
B.2.6 从烧杯中移走搅拌棒，处理内装物。将搅拌棒和烧杯清洗干净。
B.2.7 每个样品做两次试验。取两次结果的算术平均值作为最终试验结果。
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